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    Accueil » Cellules cardiaques étirées : TRPA1, MG23 et les sparks de calcium
    Bien-être

    Cellules cardiaques étirées : TRPA1, MG23 et les sparks de calcium

    CamPar Cam1 octobre 2026Mise à jour:1 octobre 2026Aucun commentaire12 Minutes de Lecture
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    Microscopic image showcasing the intricate structure and texture of plant cells.
    Photo de turek sur Pexels.
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    Quand une cellule cardiaque est étirée, elle ne se contente pas de modifier sa contraction : elle change aussi sa gestion du calcium. Deux publications, parues en 2025 et 2026, étudient ce phénomène avec des cellules cardiaques, des souris et deux acteurs nommés TRPA1 et MG23. Leurs noms font presque penser à des références de lave-vaisselle, mais la question est sérieuse : comment une contrainte mécanique peut-elle modifier l’activité d’une cellule du cœur?

    Le mot spark désigne ici une petite libération locale de calcium à l’intérieur d’une cellule musculaire cardiaque. Ce n’est ni une étincelle électrique visible ni un symptôme que l’on peut reconnaître chez soi. La mécanique cellulaire a ses petites lignes, et elles comptent.

    Le cœur sous tension, sans séance de Pilates

    Une étude publiée en 2025 dans le Journal of the American Heart Association a analysé des cardiomyocytes atriaux, c’est-à-dire des cellules musculaires des oreillettes. Les chercheurs ont travaillé sur des cellules fraîchement isolées de l’oreillette gauche du lapin, du porc et de tissus humains.

    Pour reproduire un étirement, ils ont utilisé des microtiges de verre qui tiraient les cellules dans leur axe. Un microscope confocal suivait ensuite le calcium cytosolique grâce à un marqueur fluorescent. Le protocole comparait les cellules à leur longueur sarcomérique de repos, d’environ 1,79 micromètre, avec une augmentation sévère d’environ 12 %.

    Dans ce modèle, l’étirement diastolique augmentait la fréquence des sparks de calcium. Ces événements correspondent à de petites libérations depuis le réticulum sarcoplasmique, le compartiment qui stocke une partie du calcium nécessaire à la contraction. Ils ne constituent pas, à eux seuls, une arythmie observée sur un électrocardiogramme.

    Le résultat décrit une réaction cellulaire mesurée au microscope, pas une situation quotidienne vécue par une personne.

    Calcium fait son show, TRPA1 garde la porte

    Colorful microscopic view of plant tissue showing cells and structure.
    Photo de Fayette Reynolds M.S. sur Pexels.

    Les expériences ont ensuite cherché le chemin suivi par le signal. Lorsque les microtubules étaient désorganisés avec de la colchicine, l’augmentation des sparks provoquée par l’étirement disparaissait. Le réseau de microtubules semble donc nécessaire à la transmission d’une partie de la contrainte mécanique dans la cellule.

    Les sparks n’étaient plus détectables lorsque le sodium et le calcium étaient retirés du milieu extérieur. Ce résultat suggère que le phénomène dépend d’une entrée de sodium ou de calcium à travers la membrane cellulaire, directement ou indirectement reliée à la libération de calcium interne.

    Les bloqueurs sélectifs de TRPA1, notamment HC-030031 et A-967079, empêchaient l’augmentation des sparks. En revanche, l’inhibition de la NADPH oxydase 2 et la neutralisation des espèces réactives de l’oxygène ne modifiaient pas le phénomène dans les conditions testées. La piste observée est donc mécanique et ionique, sans signal oxydatif détectable dans cette expérience.

    Piezo1, un autre canal sensible aux forces mécaniques, augmentait l’activité de base des sparks, puis l’étirement ajoutait un effet. L’activation de TRPA1 augmentait aussi l’activité de base, mais l’étirement n’ajoutait alors pas d’augmentation supplémentaire. Les bloqueurs de TRPA1 empêchaient le phénomène, même lorsque Piezo1 était activé. Dans ce modèle de cellules atriales, ces résultats font de TRPA1 un régulateur important de la réponse à l’étirement. Ils ne permettent pas de mesurer le rôle de Piezo1 dans un cœur humain vivant.

    Une expérience cellulaire ne remplace pas un avis médical

    Cet article explique des résultats obtenus sur des cellules, des souris et un fantôme expérimental. Il ne permet pas d’interpréter une palpitation, un malaise ou une douleur thoracique. En cas de symptôme ou de doute, la situation doit être évaluée par un professionnel de santé.

    Trois espèces au rapport, mais pas trois patients

    Le fait d’observer le phénomène dans des cellules atriales de lapin, de porc et d’humain élargit le modèle expérimental. Cela ne transforme pas l’expérience en validation clinique. Les cellules humaines restent des cellules isolées, étudiées hors d’un cœur organisé avec sa circulation, son système nerveux et ses interactions entre cellules.

    La méthode permet de suivre précisément le calcium et de tester un mécanisme. Elle ne répond pas à une autre question : ce mécanisme intervient-il chez des personnes dans une situation donnée, et avec quelle importance? Entre une cellule maintenue sur une lame et un cœur vivant, il y a quelques niveaux de complexité. Pas franchement un détail.

    Quand la pression monte, MG23 sort du cadre

    Une publication de Dorward et ses collègues, parue en 2026 dans le FASEB Journalétudie un autre canal conduisant le calcium à l’intérieur des membranes du réticulum endoplasmique, du réticulum sarcoplasmique et des membranes nucléaires : MG23.

    Cette fois, les chercheurs ont utilisé des souris normales et des souris dépourvues du gène Mg23. Une surcharge de pression a été provoquée par une perfusion sous-cutanée d’angiotensine II à la dose de 1,1 mg/kg/jour pendant dix jours. Chez les souris normales, cette contrainte augmentait l’expression de MG23 dans le cœur.

    Les souris sans Mg23 présentaient moins d’hypertrophie du ventricule gauche et moins de fibrose après l’exposition à l’angiotensine II. Leur fonction cardiaque était décrite comme normale par rapport aux animaux témoins traités. Les cardiomyocytes de ces souris avaient aussi des profils de sparks différents, compatibles avec un rôle de MG23 dans la fuite de calcium du réticulum sarcoplasmique.

    Dans une lignée cellulaire ventriculaire appelée H9C2, la surexpression de MG23 réduisait les réserves de calcium du réticulum sarcoplasmique. L’ensemble des résultats suggère une implication de MG23 dans la dérégulation précoce du calcium lors d’une atteinte liée à la surcharge de pression.

    TRPA1 et MG23 ne racontent pas la même histoire : le premier intervient dans un modèle d’étirement de cellules atriales, le second dans un modèle murin de surcharge de pression. Les réunir sous l’étiquette vague de canal du cœur ferait perdre la nuance qui donne leur intérêt aux deux publications.

    Les sparks ne sont pas les étincelles du pacemaker

    a person holding a lit sparkler in their hand
    Photo de Mulyadi sur Unsplash.

    Le vocabulaire peut prêter à confusion. Une revue publiée en 2013 dans Neuron rappelle le fonctionnement général d’un canal ionique : un pore s’ouvre, des ions le traversent, puis le pore se referme. Ces flux participent aux signaux électriques des nerfs et des muscles, dont le muscle cardiaque. Un spark calcique reste toutefois un événement microscopique de gestion du calcium, pas une décharge électrique.

    Une étude publiée en 2016 dans Health Physics s’est intéressée à une autre notion d’étincelle : les décharges électriques susceptibles d’interférer avec des stimulateurs cardiaques implantés. Korpinen et ses collègues ont placé 29 pacemakers dans un fantôme de taille humaine et les ont exposés à des décharges simulant une situation sous une ligne électrique de 400 kilovolts.

    Aucune interférence n’a été observée avec les 20 appareils testés en configuration bipolaire. Un appareil en configuration unipolaire a interprété à tort les signaux comme des extrasystoles ventriculaires pendant deux secondes, avec une fréquence affichée supérieure à 400 battements par minute. Cette expérience ne portait pas sur des patients et n’étudiait pas les sparks de calcium. Elle montre simplement qu’un même mot peut désigner deux phénomènes très différents.

    Le cœur préfère les mécanismes aux slogans

    Les deux publications récentes convergent vers une même question : une contrainte mécanique peut modifier les flux ioniques et la gestion du calcium dans les cellules cardiaques. Elles ne décrivent toutefois ni le même canal, ni le même type de cellule, ni le même modèle expérimental. TRPA1 apparaît dans la réponse à l’étirement de cellules atriales. MG23 est étudié dans une surcharge de pression chez la souris et dans une lignée cellulaire ventriculaire.

    Pour TRPA1, les auteurs de l’étude publiée en 2025 indiquent que des recherches chez l’animal vivant et des études cliniques sont nécessaires. Elles devront déterminer si l’activité de ce canal est associée au risque ou à la progression de la fibrillation atriale. Pour l’instant, les résultats éclairent un mécanisme possible, pas une méthode de dépistage.

    Une palpitation inhabituelle, un malaise ou une douleur thoracique ne se lisent pas à travers ces résultats de laboratoire. TRPA1 et MG23 restent des pistes de recherche, pas des boutons sur lesquels appuyer à la maison.

    Sources et références scientifiques
    1. Stretch‐Induced Increase in Ca2+‐Spark Rate in Rabbit Atrial Cardiomyocytes Requires TRPA1 and Intact Microtubule Network – PMC. Journal of the American Heart Association. DOI: 10.1161/jaha.124.040495 · PMID: 40879009.
    2. 1. Nazir SA, Lab MJ. Mechanoelectric feedback in the atrium of the isolated Guinea‐pig heart. Cardiovasc Res. 1996;32:112-119. doi: 10.1016/S0008-6363(96)00077-6 [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/S0008-6363(96)00077-6.
    3. 2. Ravelli F, Allessie M. Effects of atrial dilatation on refractory period and vulnerability to atrial fibrillation in the isolated Langendorff‐perfused rabbit heart. Circulation. 1997;96:1686-1695. doi: 10.1161/01.CIR.96.5.1686 [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1161/01.CIR.96.5.1686.
    4. 3. Ravelli F, Mase M, del Greco M, Marini M, Disertori M. Acute atrial dilatation slows conduction and increases AF vulnerability in the human atrium. J Cardiovasc Electrophysiol. 2011;22:394-401. doi: 10.1111/j.1540-8167.2010.01939.x [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1111/j.1540-8167.2010.01939.x.
    5. 4. Tavi P, Han C, Weckstrom M. Mechanisms of stretch‐induced changes in [Ca2+]i in rat atrial myocytes: role of increased troponin C affinity and stretch‐activated ion channels. Circ Res. 1998;83:1165-1177. doi: 10.1161/01.res.83.11.1165 [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1161/01.res.83.11.1165.
    6. 5. Cameron BA, Baumeister PA, Lawen T, Rafferty SA, Taeb B, Stoyek MR, Greiner J, Uzelac I, Fenton FH, Peyronnet R, Kohl P, et al. Disturbed repolarization‐relaxation coupling during acute myocardial ischemia permits systolic mechano‐arrhythmogenesis. Circ Res. 2025; 137 (in press). doi: 10.1161/CIRCRESAHA.124.326057. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1161/CIRCRESAHA.124.326057.
    7. 6. Ravelli F. Mechano‐electric feedback and atrial fibrillation. Prog Biophys Mol Biol. 2003;82:137-149. doi: 10.1016/S0079-6107(03)00011-7 [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/S0079-6107(03)00011-7.
    8. 7. Quinn TA, Jin H, Lee P, Kohl P. Mechanically induced ectopy via stretch‐activated cation‐nonselective channels is caused by local tissue deformation and results in ventricular fibrillation if triggered on the repolarization wave edge (commotio cordis). Circ Arrhythm Electrophysiol. 2017;10:e004777. doi: 10.1161/CIRCEP.116.004777 [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1161/CIRCEP.116.004777.
    9. 8. Quinn TA, Kohl P. Cardiac mechano‐electric coupling: acute effects of mechanical stimulation on heart rate and rhythm. Physiol Rev. 2021;101:37-92. doi: 10.1152/physrev.00036.2019 [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1152/physrev.00036.2019.
    10. 9. Iribe G, Ward CW, Camelliti P, Bollensdorff C, Mason F, Burton RA, Garny A, Morphew MK, Hoenger A, Lederer WJ, et al. Axial stretch of rat single ventricular cardiomyocytes causes an acute and transient increase in Ca2+ spark rate. Circ Res. 2009;104:787-795. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.108.193334 [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1161/CIRCRESAHA.108.193334.
    11. 10. Prosser BL, Ward CW, Lederer WJ. X‐ROS signaling: rapid mechano‐chemo transduction in heart. Science. 2011;333:1440-1445. doi: 10.1126/science.1202768 [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1126/science.1202768.
    12. 11. Cannell MB. Pulling on the heart strings: a new mechanism within Starling's law of the heart? Circ Res. 2009;104:715-716. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.109.195511 [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1161/CIRCRESAHA.109.195511.
    13. 12. Jiang F, Yin K, Wu K, Zhang M, Wang S, Cheng H, Zhou Z, Xiao B. The mechanosensitive Piezo1 channel mediates heart mechano‐chemo transduction. Nat Commun. 2021;1:869. doi: 10.1038/s41467-021-21178-4 [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1038/s41467-021-21178-4.
    14. Korpinen L, Kuisti H, Tarao H, Virtanen V, Pääkkönen R, Dovan T, Kavet R.. Possible Influences of Spark Discharges on Cardiac Pacemakers.. Health physics. 2016. DOI: 10.1097/hp.0000000000000373 · PMID: 26606060. (résumé scientifique structuré; texte intégral non fourni)
    15. Dorward AM, Robertson GB, Sneddon C, Edel RC, O'Rourke CL, Um IH, Harrison DJ, Nishi M, Takeshima H, Murdoch CE, Pitt SJ.. Knockout of the Intracellular Calcium Conducting Ion Channel Mitsugumin 23 (MG23) Protects Against Pressure Overload Induced Left Ventricular Hypertrophy and Cardiac Dysfunction.. FASEB journal : official publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology. 2026. DOI: 10.1096/fj.202500832r · PMID: 41568959. (résumé scientifique structuré; texte intégral non fourni)
    16. Conduits of life’s spark: A perspective on ion channel research since the birth of Neuron – PMC. Neuron. DOI: 10.1016/j.neuron.2013.10.040 · PMID: 24183018.
    17. Aggarwal SK, MacKinnon R. Contribution of the S4 segment to gating charge in the Shaker K+ channel. Neuron. 1996;16:1169-1177. doi: 10.1016/s0896-6273(00)80143-9. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/s0896-6273(00)80143-9.
    18. Alam A, Jiang Y. Structural studies of ion selectivity in tetrameric cation channels. J Gen Physiol. 2011;137:397-403. doi: 10.1085/jgp.201010546. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1085/jgp.201010546.
    19. Alexander GM, Rogan SC, Abbas AI, Armbruster BN, Pei Y, Allen JA, Nonneman RJ, Hartmann J, Moy SS, Nicolelis MA, et al. Remote control of neuronal activity in transgenic mice expressing evolved G protein-coupled receptors. Neuron. 2009;63:27-39. doi: 10.1016/j.neuron.2009.06.014. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.neuron.2009.06.014.
    20. Alexander JK, Sagher D, Krivoshein AV, Criado M, Jefford G, Green WN. Ric-3 promotes alpha7 nicotinic receptor assembly and trafficking through the ER subcompartment of dendrites. J Neurosci. 2010;30:10112-10126. doi: 10.1523/JNEUROSCI.6344-09.2010. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1523/JNEUROSCI.6344-09.2010.
    21. Aoto J, Nam CI, Poon MM, Ting P, Chen L. Synaptic signaling by all-trans retinoic acid in homeostatic synaptic plasticity. Neuron. 2008;60:308-320. doi: 10.1016/j.neuron.2008.08.012. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/j.neuron.2008.08.012.
    22. Armstrong CM, Bezanilla F. Currents related to movement of the gating particles of the sodium channels. Nature. 1973;242:459-461. doi: 10.1038/242459a0. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1038/242459a0.
    23. Arrigoni C, Schroeder I, Romani G, Van Etten JL, Thiel G, Moroni A. The voltage-sensing domain of a phosphatase gates the pore of a potassium channel. J Gen Physiol. 2013;141:389-395. doi: 10.1085/jgp.201210940. [DOI] [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1085/jgp.201210940.
    24. Ashcroft FM. Ion Channels and Disease. San Diego, CA: Academic Press; 2000. [Google Scholar].
    25. Ashcroft FM. From molecule to malady. Nature. 2006;440:440-447. doi: 10.1038/nature04707. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1038/nature04707.
    26. Auld VJ, Goldin AL, Krafte DS, Marshall J, Dunn JM, Catterall WA, Lester HA, Davidson N, Dunn RJ. A rat brain Na+ channel alpha subunit with novel gating properties. Neuron. 1988;1:449-461. doi: 10.1016/0896-6273(88)90176-6. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1016/0896-6273(88)90176-6.
    27. Backx PH, Yue DT, Lawrence JH, Marban E, Tomaselli GF. Molecular localization of an ion-binding site within the pore of mammalian sodium channels. Science. 1992;257:248-251. doi: 10.1126/science.1321496. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1126/science.1321496.
    28. Bagal SK, Brown AD, Cox PJ, Omoto K, Owen RM, Pryde DC, Sidders B, Skerratt SE, Stevens EB, Storer RI, et al. Ion channels as therapeutic targets: a drug discovery perspective. Journal of medicinal chemistry. 2013;56:593-624. doi: 10.1021/jm3011433. [DOI] [PubMed] [Google Scholar]. doi:10.1021/jm3011433.

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